Postepy Hig Med Dosw. (online), 2007; 61: 708-717
Review
Choroby u ludzi spowodowane chlamydiami
i chlamydofilami
Human diseases caused by chlamydia and chlamydophila
Małgorzata Pawlikowska, Wiesław Deptuła
Katedra Mikrobiologii i Immunologii Wydziału Nauk Przyrodniczych Uniwersytetu Szczecińskiego
Adres do korespondencji
prof. dr hab. Wiesław Deptuła, Katedra Mikrobiologii i Immunologii Wydziału Nauk Przyrodniczych Uniwersytetu
Szczecińskiego, ul. Felczaka 3c, 71-412 Szczecin; e-mail: kurp13@univ.szczecin.pl
| Otrzymano: | 2007.02.05
|
| Zaakceptowano: | 2007.10.31
|
| Opublikowano: | 2007.11.27
|
Streszczenie
Chlamydie i chlamydofile są bakteriami powszechnie występującymi, o czym świadczą ostatnio
opisane „chlamydie środowiskowe”. „Klasyczne chlamydie”, takie jak Chlamydia trachomatis
czy Chlamydophila pneumoniae, to zarazki stanowiące duże zagrożenie dla zdrowia człowieka,
powodujące wiele schorzeń, w tym o przebiegu niejawnym. W pracy przedstawiono biologię
i systematykę tych zarazków oraz choroby wywołane przez nie u człowieka, uwzględniając
schorzenia wywoływane przez „chlamydie klasyczne” i „chlamydie środowiskowe”.
Słowa kluczowe: chlamydie • chlamydofile • chlamydie środowiskowe
Summary
Chlamydiae and Chlamydophilae are bacteria which are very common in the environment, the proof
of which can be the recently described “environmental Chlamydiae”. The classical Chlamydiae,
such as Chlamydia trachomatis and Chlamydophila pneumoniae, posed a threat to human health,
causing several diseases, including those with lethal course. In this article the biology and systematics
of these bacteria and the diseases caused by them in humans, including those caused by
classical and environmental Chlamydiae, are presented.
Key words: Chlamydia • Chlamydophila • environmental Chlamydiae
1. WPROWADZENIE
Chlamydie i chlamydofile to zarazki należące do rzędu
Chlamydiales (
tab. 1), powodujące wiele schorzeń u ludzi
(
tab. 2) znanych od wielu tysięcy lat. Pierwsze wzmianki
o chorobie wywoływanej przez te mikroorganizmy – trachomie
(jaglicy), pochodzą z Chin sprzed 5 tysięcy lat oraz
z Egiptu z tzw. papirusu Ebersa, datowanego na XVI wiek
p.n.e., z Grecji z V w. p.n.e. czy z Rzymu z I w. p.n.e. [
29].
W latach 1909–1911 Lindner, Halberstaedter i Prowazek
oraz Staargardt wykazali występowanie wewnątrzkomórkowych
wtrętów w przypadkach jaglicy u noworodków,
a także w zapaleniu cewki moczowej i szyjki macicy [
29].
Wtedy też udowodniono powiązanie między schorzeniami
narządów moczowo-płciowych kobiet, a zapaleniem spojówek
noworodków [
29]. W latach 1929–1930 Levinthal,
Cole i Lillie wykazali niezależnie od siebie wewnątrzkomórkowe
wtręty w preparatach od ptaków i od ludzi chorujących
na atypowe zapalenie płuc, które „przeszło” od ptaków
(psitakoza) [
29]. W latach 30 XX w., Bedson i wsp.
[
29] opisali cykl życiowy bakterii izolowanych od człowieka
z przypadków choroby ptasiej (ornitozy). W tych latach
oraz 40 XX w. wykazano także, że ziarniniak weneryczny
(
lymphogranuloma venereum – LGV) jest wywoływany także
przez chlamydie (
Bedsonia) [
29], a w 1957 roku T’ang
i wsp. [
29] wyizolowali na woreczku żółtkowym jaja kurzego,
z materiału od pacjenta z chorobą weneryczną, po raz
pierwszy
Chlamydia trachomatis, a w 1965 roku Gordon
i Quan [
29] uzyskali ten zarazek w hodowli komórkowej.
W latach 70 ub.w. nastąpił rozwój badań nad chlamydiami,
jako że wyróżniono serotypy wśród
Ch. trachomatis
oraz wykazano udział tych bakterii w schorzeniach dróg
rodnych, dopracowano też metody ich hodowli [
29]. Lata
80 ub.w., to określenie struktury antygenowej tego zarazka
oraz opracowanie nadal powszechnie stosowanego testu
ELISA do diagnostyki [
29]. W latach 1984–1987 opisano
udział czynnika TWAR –
Chlamydia pneumoniae (obecnie
Chlamydophila pneumoniae) w chorobach dróg oddechowych
człowieka [
25], a w okresie 1988–1990 zespół Deptuły
[
9,
43] wykazał występowanie
Ch. trachomatis – zarazka
występującego u człowieka - w nasieniu buhajów, charakteryzując
dodatkowo obraz immunologiczny u tak zainfekowanych
zwierząt. W 1993 r. Rogers i wsp. [
42] opisali zapalenie
spojówek i rogówki u świń powodowane także przez
Ch. trachomatis. Kolejne dziesięciolecie ubiegłego wieku
to wyodrębnienie nowych gatunków:
Ch. pecorum, co spowodowało,
że rodzina
Chlamydiaceae reprezentowana była
przez cztery gatunki w rodzaju
Chlamydia (Ch.), to jest
Ch.
trachomatis, Ch. psittaci, Ch. pneumoniae i
Ch. pecorum.
Następne lata to nowa systematyka oparta o analizę genetyczną
i opisanie w rzędzie
Chlamydiales nowych chlamydii
określanych jako „chlamydie środowiskowe” (
tab. 1)
– zarazków potencjalnie chorobotwórczych dla człowieka.
Chlamydie, a obecnie chlamydie i chlamydofile, wcześniej
określano wirusem trachoma,
Bedsonia, Myagawanella,
Ricketsiformis, Rakeya, Ehrlichia, Halpowria, ornithosisagent,
TRIC-agent, PLT-agent. Obecny termin chlamydia (gr.
chlamus – peleryna) pojawił się w piśmiennictwie w 1945
roku [
29], a chlamydofila w 1999 roku [
10].
Tabela 1. Systematyka rzędu
Chlamydiales – obowiązująca [
11,
36] i poprzednia [
19]

Tabela 2. Charakterystyka zarazków z rodziny Chlamydiaceae chorobotwórczych dla człowieka

* Wykazano [
35], że w obrębie tych dwóch gatunków są szczepy różniące się pod względem immunologicznym, co sugeruje występowanie wśród nich
3 immunotypów.
2. OGÓLNA CHARAKTERYSTYKA CHLAMYDII I CHLAMYDOFILII
Chlamydie i chlamydofile są drobnoustrojami wykazującymi
cechy pośrednie między bakteriami, a wirusami. Do
wirusów upodabnia je tworzenie wtrętów (inkluzji), małe
rozmiary, wyłącznie wewnątrzkomórkowy sposób rozmnażania
w żywych komórkach oraz zależność od ATP
gospodarza [
29,
35]. Natomiast struktura ściany komórkowej,
obecność obu kwasów nukleinowych, synteza składników
komórkowych za pomocą własnego aparatu enzymatycznego,
obecność organelli komórkowych i cytoplazmy,
wrażliwość na antybiotyki (m.in. erytromycynę, tetracykliny),
jodynę, fenol, kwasy i zasady oraz na bardzo wysokie
i niskie pH, to podobieństwa do bakterii [
29,
35]. Komórki
tych zarazków mają ścianę komórkową podobną jak u bakterii
Gram-ujemnych, czyli trójwarstwową błonę zewnętrzną
(OM – outer membrane) zbudowaną z lipopolisacharydów
oraz cienką błonę wewnętrzną – cytoplazmatyczną
(IM – inner membrane), pomiędzy którymi jest przestrzeń
periplazmatyczna [
29,
35]. Jednakże w ścianie chlamydii,
w odróżnieniu od bakterii Gram-ujemnych, nie ma kwasu
muraminowego, a więc i mureiny [
29,
35]. Chlamydie i chlamydofile mogą powodować zakażenia objawowe, bezobjawowe,
utajone, a także latentne [
29,
35]. Cechą charakterystyczną
tych zarazków jest ich unikalny cykl rozwojowy
trwający 48–72 godz, z dwiema postaciami morfologicznymi:
ciałkiem elementarnym – EB (elementary body) –
jako postać zakaźna i ciałkiem siateczkowatym – RB (reticulate
body) jako postać niezakaźna [
29,
35]. Po wniknięciu
EB do komórki, w wyniku m.in. endocytozy, powstaje fagosom,
który nazywamy inkluzją. Wewnątrz tej inkluzji,
ciałka EB przekształcają się w ciałka RB, które dzielą się
przez podział poprzeczny. W dalszym czasie dochodzi do
przekształcenia RB w EB i następuje liza ściany fagosomu
– pęknięcie inkluzji i uwolnienie EB do wnętrza komórki.
Gdy w komórce liczba EB osiąga liczbę 100–1000, dochodzi
do uwolnienia ich z komórki i następuje zainfekowanie
innych komórek [
29,
35]. W tym czasie komórki energię
czerpią z ATP komórki gospodarza [
29,
35].
Wykazano, że drobnoustroje te zawierają takie antygeny
jak [
29,
35]:
• antygen rodzajowy – grupowoswoisty, ciepłostały, o charakterze
lipopolisacharydowym, którego serologicznie
aktywnym komponentem jest Kdo (kwas 2-keto-
3-oksyoktonowy). Antygen ten stwierdzany jest w obu
postaciach morfologicznych, to jest w ciałku EB i RB
i występuje przez cały cykl rozwojowy. Jego obecność
stwierdzić można w odczynie wiązania dopełniacza
(OWD), w teście mikroimmunofluorescencyjnym (MIF)
i immunoenzymatycznym (ELISA),
• antygen gatunkowoswoisty, ciepłochwiejny, o charakterze
białkowym wykrywany w teście OWD i teście skórnym
(DTH),
• antygen związany z błoną zewnętrzną MOMP (major
outer membrane protein) i z hemaglutyniną tych zarazków,
• antygen warunkowany białkami szoku termicznego
(HSP) tych mikroorganizmów.
2.1. Biologia bakterii z rodzaju Chlamydia sp.
Charakterystyczną cechą zarazków z tego rodzaju jest zdolność
do wytwarzania glikogenu, który jest wykrywany
już w inkluzjach. Większość zarazków z tego rodzaju ma
plazmidy i wykazuje różną reaktywność na sulfadiazynę
[
8,
29]. Rodzaj
Chlamydia sp. reprezentowany jest przez
trzy gatunki
Ch. trachomatis, Ch. muridarum i
Ch. suis
(
tab. 1,
3), wśród których tylko
Ch. trachomatis jest chorobotwórcza
dla człowieka (
tab. 2,
3).
Tabela 3. Charakterystyka naturalnych infekcji bakteriami z rodziny
Chlamydiaceae [
7,
35,
39,
46]

* Nieliczne gatunki izolowano dodatkowo od innych gatunków zwierząt niż typowy gospodarz:
Ch. trachomatis od bydła [
9,
43];
Chl. psittaci od żółwi,
bydła, kotów, zajęcy, piżmoszczurów, człowieka [
4,
7,
8,
26,
51];
Chl. pneumoniae od żab [
2,
40] oraz od węży i żółwi [
49];
Chl. felis od człowieka [
46];
Chl. abortus od człowieka [
22,
39], od koni, świni, królików, myszy, świnek morskich, zwierząt drapieżnych, psów [
8,
18].
Gatunek
Chlamydia trachomatis (
tab. 2) obecnie obejmuje
dwa biotypy: trachoma i
lymphogranuloma venereum
(LGV). W biotypie trachoma wyróżniono 14 serotypów
oznaczonych literami A-K i Ba, Da, Ia, zaś w obrębie biotypu
LGV, 4 serotypy – L
1, L
2, L
2a i L
3. Serotypy A-C są
związane z endemiczną trachomą (jaglicą), D-K z chorobami
wielu narządów, natomiast serotypy L
1, L
2 i L
3 w obrębie
biotypu LGV, wiążą się z ziarnicą weneryczną pachwin
(
lymphogranuloma venerum) (
tab. 2). Analiza ich
cech wykazała pokrewieństwo serotypu L
1 i L
2 z biotypu
LGV, z serotypami B i E z biotypu trachoma oraz serotypu
L
3 z serotypem A, C i H [
10].
2.2. Biologia bakterii z rodzaju Chlamydophila sp.
Wśród rodzaju
Chlamydophila sp. opisano 6 gatunków
(
tab. 1), wśród których tylko cztery, to jest
Chl. pneumoniae,
Chl. psittaci, Chl. abortus, Chl. felis, są chorobotwórcze
dla człowieka (
tab. 2,
3). Zarazki z tego rodzaju mają różną
morfologię, wrażliwość na tetracykliny, nie wytwarzają
wystarczającej do wykrycia ilości glikogenu w inkluzjach
i wszystkie, poza
Chl. abortus, mają plazmidy
[
7,
8,
10]. Ponadto wszystkie wspomniane gatunki tego rodzaju, wykazują patogenne działanie wobec wielu gatunków
zwierząt (bydło, owce, kozy, konie, świnie, koty, psy,
zwierzęta drapieżne, koala, króliki, zające, piżmoszczur,
myszy, świnki morskie, ptaki, żółwie, węże, żaby), w tym
3 z nich (
Chl. psittaci, Chl. abortus, Chl. felis) są czynnikiem
zoonotycznym dla człowieka (
tab. 3).
Chlamydophila pneumoniae tworzą trzy biotypy TWAR,
Equine i Koala, izolowane odpowiednio od człowieka,
koni i koali, ale tylko biotyp TWAR jest chorobotwórczy
dla człowieka i powoduje wiele schorzeń np. układu oddechowego,
układu krążenia oraz może być przyczyną choroby
Alzheimera u ludzi.
Chlamydophila psittaci reprezentowana jest przez 8 serotypów
(A, B, C, D, E, F, WC, M56) [
7] i jest chorobotwórcza
aż dla 140 gatunków ptaków oraz ssaków (bydło, koty, zające,
piżmoszczury) i gadów (żółwie), a tylko 4 z nich (serotypy
A, C, D i E) są chorobotwórcze dla człowieka.
Chlamydophila abortus wykazuje głównie tropizm do łożyska
przeżuwaczy (bydło, owce, kozy) powodując ronienia
i śmiertelność ich noworodków. Zarazek ten może
być także przyczyną ronień u kobiet, zwłaszcza pracujących
przy owcach, a także przyczyną zapalenia płuc u ludzi
i zapalenia narządów miednicy mniejszej. Rzadziej
notuje się ronienia u klaczy, świń, królików, myszy, świnek
morskich, zwierząt drapieżnych. Może ona być również
przyczyną zapalenia spojówek u psów.
Chlamydophila felis jedynie sporadycznie może wywoływać
zoonozy u ludzi i jest przyczyną zapalenia spojówek
i błony śluzowej nosa kotów.
3. CHLAMYDIOZY CZŁOWIEKA
Choroby te u człowieka są wywoływane przez
Chlamydia
trachomatis (
tab. 2). Najstarszą chorobą wywoływaną przez
tę bakterię jest trachoma (z gr.
trackhoma – szorstki; jaglica),
którą wywołują serotypy A, B, Ba, C zaliczane do biotypu
trachoma. Objawy kliniczne jaglicy to przede wszystkim
zapalenie spojówek i rogówki. W aktywnym okresie choroby
obserwuje się zmiany pęcherzykowo-grudkowe, tzw.
ziarninę jagliczą oraz ogniskowe zmiany zapalne rogówki.
Dochodzi do wrastania naczyń krwionośnych do rogówki
i powstaje wtedy tzw. łuszczka. Zmiany zapalne zanikają
samoistnie, ale mogą pozostać też blizny na spojówkach, co
może prowadzić nawet do deformacji powiek. Rzęsy skierowane
w stronę gałki ocznej podrażniają rogówkę, prowadząc
do powstania owrzodzeń. Zmiany powstałe w wyniku
przebiegu tej choroby mogą prowadzić do ograniczenia pola
widzenia lub do całkowitej utraty wzroku [
55]. Schorzenie
to występuje endemicznie w 48 krajach, głównie dotyczy
to krajów Bliskiego Wschodu i Afryki, Azji, Ameryki
Łacińskiej i Australazji. Transmisja bakterii następuje z oka
do oka głównie za przyczyną much [
55]. Choroba ta przenosi
się także w rodzinie poprzez pocieranie oczu i dotykanie
oczu dzieci lub przez używanie tych samych ręczników,
jak też noszenie tych samych ubrań [
55].
Następnymi schorzeniami powodowanymi przez
Ch.
trachomatis są choroby układu moczowo-płciowego u mężczyzn
i u kobiet. U mężczyzn
Ch. trachomatis – serotyp
D-K powoduje nierzeżączkowe zapalenie cewki moczowej
(NGU – nongonococcal urethritis), które rozwija się
7–14 dni od zakażenia [
55]. Zazwyczaj NGU ma charakter
podostry i skąpoobjawowy i charakteryzuje je pieczenie,
świąd i ból w cewce moczowej, wyciek z cewki moczowej
o charakterze śluzowym lub śluzowo-ropnym oraz
bóle podbrzusza i jąder [
55].
Ch. trachomatis jest także
przyczyną tzw. porzeżączkowego zapalenia cewki moczowej
(PGU – postgonococcal urethritis), kiedy po wyleczeniu
zakażenia na tle
Neisseria gonorrhoeae, dochodzi
do namnożenia współistniejącej
Ch. trachomatis [
3].
Kolejnym schorzeniem u mężczyzn jest zapalenie prostaty
[
55], które nie jest typowym schorzeniem wywoływanym
przez tę bakterię, jednakże udział tej bakterii w ostatnich
latach jest znaczny, głównie u mężczyzn poniżej 35
roku życia. Zapalenie gruczołu krokowego charakteryzuje
się tzw. triadą objawów: bólem w obrębie krocza promieniującym
do narządów płciowych, dolegliwościami ze
strony układu moczowego (częstomocz, bolesność przy
oddawaniu moczu) oraz zaburzeniem funkcji narządów
płciowych (przedwczesny wytrysk, ból w trakcie ejakulacji,
niepełny wzwód członka) [
55].
Ch. trachomatis powoduje
u mężczyzn, szczególnie młodych, również zapalenie
najądrzy [
55], które objawia się bólem podbrzusza
oraz gorączką, a nieleczone może doprowadzić do niepłodności.
Na tle zakażenia chlamydialnego może również powstać
niepłodność wskutek zaburzenia budowy i funkcji
plemników lub w wyniku indukowania odpowiedzi immunologicznej
prowadzącej do wytwarzania autoprzeciwciał
przeciw plemnikom [
55].
U kobiet częstym schorzeniem jest zapalenie szyjki macicy,
które najczęściej ma przebieg bezobjawowy i jest wywołane serotypami D-K (najczęściej serotypem E) [
55].
Objawia się ono bólem przy oddawaniu moczu, często
też dochodzi do obrzmienia lub zaczerwienienia szyjki
macicy, można też obserwować pęcherzyki na szyjce, podobnie
jak przy trachomie [
55]. Zakażenie to może utrzymywać
się przez lata i może to być związane z opornością
na działanie elementów układu odpornościowego [
6].
Wydaje się też, że
Ch. trachomatis może być także przyczyną
raka szyjki macicy jako kofaktor ludzkiego papiloma
wirusa typ 16 (HPV – human papillomavirus), głównie
przy stanach przewlekłego zakażenia [
47]. Kolejnym
schorzeniem u kobiet wywołanym przez
Ch. trachomatis
jest zapalenie moczowodów, objawiające się zwiększoną
częstotliwością i bólem przy oddawaniu moczu, często
też występuje ropomocz [
31]. Najczęstszą jednak chorobą
jest zapalenie narządów miednicy mniejszej – PID
(pelvic inflammatory disease), które objawia się bezobjawowym
przerostem błony śluzowej macicy, zapaleniem jajowodów,
często ropniem jajników, zapaleniem otrzewnej
czy też zapaleniem okołowątrobowej tkanki łącznej [
55].
Następstwem PID jest często niepłodność oraz tzw. syndrom
przewlekłego bólu narządów miednicy [
55]. Innym
schorzeniem u kobiet i mężczyzn jest zapalenie odbytnicy,
które charakteryzuje się zmianami błony śluzowej odbytu
w postaci gruzełków, zbliznowaceń czy przekrwienia
[
55]. Ze względu na łatwy dostęp
Ch. trachomatis z narządów
moczowo-płciowych do jamy otrzewnej, bakteria
ta może zakażać wiele narządów jamy brzusznej u ludzi,
powodując m.in. odotrzewnowe zapalenie wątroby (syndrom
Fitz-Hugh-Curtisa), objawiające się bólem brzucha,
nasilającym się przy ruchu, głębszym oddychaniu czy
ucisku [
55]. W wyniku rozprzestrzeniania się zakażenia
tego zarazka do jamy otrzewnej może on wywołać zakażenie
śledziony, nerek czy wyrostka robaczkowego [
55].
Dla kobiet groźne jest zakażenie
Ch. trachomatis podczas
ciąży, które może prowadzić do przedwczesnego porodu
[
5] lub też może powodować śmierć okołoporodową płodu
[
34]. Powikłaniem PID może być zespół Reitera objawiający
się m.in. zapaleniem dużych stawów i kręgosłupa,
zapaleniem błony naczyniowej oczu oraz przyczepu
ścięgien [
28,
55].
Kolejnym schorzeniem wywoływanym przez
Ch.
trachomatis u człowieka jest zapalenie spojówek u noworodków,
powodowane przez serotypy D-K biotypu trachoma,
do którego dochodzi zazwyczaj w czasie porodu [
55].
W tych przypadkach często izoluje się
Ch. trachomatis z nosogardzieli
i w przypadku złego leczenia dochodzi do zapalenia
płuc [
55]. Choroba klinicznie ujawnia się między
5 a 14 dniem po porodzie i rozpoczyna się pojawieniem
śluzowej wydzieliny z worka spojówkowego, następuje
obrzęk powiek i zaczerwienienie spojówek. Stan zapalny
dotyczy całej spojówki, a powikłaniem może być bliznowacenie
spojówki i wakuolizacja rogówki [
55]. Także
u noworodków często
Ch. trachomatis – biotyp trachoma
może być przyczyną zapalenia płuc [
55]. Dotyczy ono
dzieci między 2 a 16 tygodniem życia, przebiega zazwyczaj
bezgorączkowo, z przyspieszonym oddechem i pracą
serca, lekkim napadowym kaszlem. Przebieg tego zakażenia
zazwyczaj jest łagodny, lecz często ma tendencję
do przewlekania [
55]. Niezdiagnozowane lub nieleczone
chlamydialne zapalenie płuc może doprowadzić do trwałego
uszkodzenia układu oddechowego [
55]. Zarazek ten ma
swój udział w etiologii nagłej śmierci niemowląt (SIDS),
gdyż w badaniach pośmiertnych zmarłych dzieci z wymazów
z tchawicy i w wycinkach z płuc, wykazano występowanie
inkluzji i antygenów
Ch. trachomatis [
55].
Chorobotwórczość
Ch. trachomatis u ludzi dotyczy także
biotypu LGV tego zarazka, który jest przyczyną ziarnicy
wenerycznej pachwin (
lymphogranuloma venereum)
[
45]. Jest to choroba weneryczna, objawiająca się po 3–30
dniach inkubacji zmianami na prąciu lub wargach sromowych,
bądź też na cewce moczowej, rzadziej zmiany
te można zaobserwować na odbycie, palcach czy języku
[
45]. W dalszym rozwoju choroby występuje limfadenopatia
– przerost grudek limfatycznych pozaotrzewnowych
u kobiet i pachwinowych u mężczyzn [
45]. U niektórych
pacjentów stan taki może trwać przez lata. Rozwój choroby
powoduje przerost i destrukcję tkanek zajętych przez
tę bakterię [
27].
4. CHLAMYDOFILOZY CZŁOWIEKA
Choroby te u ludzi są spowodowane w kolejności przez
Chl.
pneumoniae – biotyp TWAR,
Chl. psittaci, Chl. abortus
i
Chl. felis (
tab. 2).
Chl. pneumoniae biotyp TWAR jest głównie przyczyną
zakażenia górnych i dolnych dróg oddechowych, a mianowicie
zapalenie zatok, ucha, gardła, oskrzeli i płuc i są
one związane z wiekiem człowieka [
14,
32]. Początkowo
zarazek ten określano jako
Chlamydia – TWAR, jako że
nazwa ta powstała z utworzenia symboli, którymi oznaczono
w latach 60 ub.w. dwa pierwsze izolaty – TW-183
oraz AR-39 [
15,
38]. Izolat TW-183 uzyskano w 1965 r.
na Tajwanie ze spojówek oka dziecka, a izolat AR-39 wyizolowano
w 1983 r. z gardła studenta w USA [
15,
38].
W późniejszych latach oba izolaty uzyskiwano głównie
z ostrych nieżytów dróg oddechowych u ludzi i klasyfikowano
je jako
Chlamydia psittaci [
38]. Obecnie przyjmuje
się, że zakażenie tym drobnoustrojem wiąże się głównie
z chorobami układu oddechowego [
38]. Zarazek ten
przenosi się drogą kropelkową powodując choroby o charakterze
łagodnym [
15,
32], a cechą charakterystyczną jest
to, iż człowiek po przejściu zakażenia tą bakterią nie uodparnia
się na niego [
14]. Jak wykazali Kuo i wsp. [
25], zakażenie
tą bakterią u dzieci w wieku szkolnym dotyczy
40% populacji, u dorosłych prawie 50%, a osób starszych
nawet 75%. Potwierdzono to także w wielu innych badaniach
[
33], w których wykazano, że zarazek ten u dzieci
występuje rzadziej niż u osób dorosłych. U dzieci infekcja
Chl. pneumoniae powoduje głównie zakażenia górnych
dróg oddechowych, tj. zatok, ucha, gardła oraz zapalenie
oskrzeli [
32]. U dzieci z zapaleniem płuc, oskrzeli, tchawicy,
gardła przeciwciała anty-
Chl. pneumoniae – biotyp
TWAR, stwierdza się u 13% pacjentów w obrębie klasy
IgM i w 10% w obrębie klasy IgG [
37].
Inną chorobą układu oddechowego, w której
Chl.
pneumoniae może brać udział jest astma oskrzelowa; wykazano,
że częściej występuje ona u osób zakażonych tą
bakterią [
33]. U pacjentów dotkniętych astmą stwierdzono
nie tylko występowanie
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR
w plwocinie i wymazach z nosa, ale także zarejestrowano
podwyższony poziom przeciwciał klasy IgG i IgA w surowicy
[
33]. Występowanie tego zarazka potwierdzono w wymazach
z nosa u dzieci chorych na astmę [
33]. Przypuszcza
się także, że astma może być następstwem wcześniej przebytego
ostrego zapalenia oskrzeli na tle
Chl. pneumoniae
– biotyp TWAR [
32,
33]. Dowodzić tego mogą przeciwciała
anty-
Chl. pneumoniae stwierdzane w surowicy 25–
50% dzieci z astmą oskrzelową oraz prawie u 100% ludzi
dorosłych dotkniętych tą chorobą [
32]. Wykazano, że
Chl.
pneumoniae może zaostrzać przebieg astmy oskrzelowej,
prowadząc do nieswoistej nadreaktywności oskrzeli, która
utrzymuje się przez 1–8 tygodni [
32].
Podejrzewa się także udział
Chl. pneumoniae w patogenezie
raka płuc; u osób dotkniętych tą chorobą, stwierdza
się podwyższony poziom przeciwciał klasy IgA i IgG dla
Chl. pneumoniae w surowicy [
24]. Przypuszcza się, że
przyczyną tego stanu, mogą być mediatory wydzielane
w czasie zakażenia
Chl. pneumoniae, które indukują proces
kancerogenezy [
33]. Także u osób z objawami przewlekłej
choroby obturacyjnej płuc (COPD – chronic obstructive
pulmonary diseae) stwierdza się podwyższony
poziom swoistych dla tej bakterii przeciwciał klasy IgG
i IgA [
33]. Innym schorzeniem związanym z chorobami
układu oddechowego, w której udział ma
Chl. pneumoniae
jest sarkoidoza, gdyż u osób dotkniętych tą chorobą zaobserwowano
podwyższony poziom przeciwciał antychlamydialnych
[
32].
Chl. pneumoniae może się przyczyniać także do rozwoju
chorób układu krążenia (
tab. 2). Wśród chorób układu
krążenia u ludzi, miażdżyca tętnic wieńcowych i choroba
wieńcowa, stanowią wysoki odsetek śmiertelności,
a etiopatogeneza tych chorób jest złożona i składają się
na nią czynniki wewnątrz- i zewnątrzustrojowe [
33,
38].
Stwierdzenie obecności przeciwciał anty-
Chl. pneumonie
– biotyp TWAR, przez badaczy w 1988 r. we krwi pacjentów
z chorobą wieńcową [
33,
38], doprowadziło do postawienia
hipotezy, że zarazek ten ma związek z powstawaniem
także innych chorób układu krążenia. Hipotezę tę
potwierdziła inna grupa badaczy [
33,
38], którzy przeciwciała
anty-
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, stwierdzili
nie tylko u chorych z miażdżycą tętnic wieńcowych, ale
również z miażdżycą innych tętnic. U większości pacjentów
z miażdżycą tętnic, wykryto nie tylko obecność przeciwciał
anty-
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, ale także
występowanie w makrofagach tych naczyń oraz w złogach
ognisk miażdżycowych i w komórkach mięśni gładkich
tętnic,
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR [
20]. Obecność
tego zarazka wykazano w blaszce miażdżycowej u prawie
80% pacjentów z chorobą wieńcową, a także w ponad
50% „blaszek” pochodzących z tętniaka aorty u ludzi
[
33,
38]. Udział tych bakterii w chorobach układu krążenia
potwierdzili także Saikku i wsp. [
44], którzy wykazali
u 65% ludzi chorych na zawał serca oraz u połowy pacjentów
z przewlekłą chorobą wieńcową, przeciwciała anty-
Chl.
pneumoniae – biotyp TWAR, klasy IgA i IgG. Wykazano
także częstsze występowanie kompleksów immunologicznych
z LPS
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, u pacjentów
z chorobą wieńcową (41% chorych), w porównaniu
z grupą kontrolną (15%) oraz u pacjentów z zawałem serca
(57%), w porównaniu z grupą kontrolną (12%) [
33,
38].
Według danych Sobańskiego i wsp. [
48] aż u 70% pacjentów
w okresie okołozawałowym oraz u ponad połowy chorych
z niestabilną dusznicą bolesną, stwierdza się wyraźny
wzrost miana przeciwciał anty-
Chl. pneumoniae – biotyp
TWAR, a także wzrost swoistych dla nich kompleksów immunologicznych.
Ponadto Gupta i wsp. [
16] zaobserwowali,
że u chorych po przebytym zawale serca i z podwyższonym
mianem przeciwciał anty-
Chl. pneumoniae – biotyp
TWAR, występują częściej inne schorzenia układu krążenia,
niż u chorych po zawale, u których nie stwierdzono
tych przeciwciał. Badania przeprowadzone na zwapniałych
zastawkach serca [
33,
38], pobranych od pacjentów poddanych
wymianie zastawki aorty oraz na zastawkach aorty
pobranych od osób zmarłych na zawał serca, wykazały
z użyciem techniki PCR, obecność
Chl. pneumoniae – biotyp
TWAR aż w połowie badanych przypadków. Juvonen
[
23] wykazał, że istnieje możliwość zapalenia naczyń na
tle
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, które może prowadzić
do wystąpienia tzw. zespołu Cogana, charakteryzującego
się zapaleniem rogówki i narządu równowagi. Badania
prowadzone przez zespół Jaukiainena [
21] u osób w wieku
13–43 lat z zapaleniem mięśnia sercowego, wykazały
także swoiste przeciwciała anty-
Chl. pneumoniae – biotyp
TWAR, z czego u 30% chorych miano IgG wynosiło
1:512 i więcej, a u prawie 60% miano IgA było zdecydowanie
mniejsze.
W ostatnich latach pojawiły się doniesienia o udziale
Chl.
pneumoniae w powstawaniu chorób układu nerwowego
(
tab. 2). Dowiedziono, że stwardnienie rozsiane (SM),
w którym dochodzi do rozpadu osłonek mielinowych substancji
białej mózgu, powstaje jako następstwo zakażenia
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR [
50]. Stosując metodę
PCR uzyskano wyniki potwierdzające obecność tego zarazka
u 100% chorych z postacią nawrotowo-osłabiającą
SM oraz u 95% chorych z postacią przewlekło-postępującą
tego schorzenia [
50]. Ponadto w 97% przypadkach
w płynie mózgowo-rdzeniowym chorych na SM, stwierdzono
sekwencje DNA typowe dla biotypu TWAR
Chl.
pneumoniae i aż u 64% chorych uzyskano dodatni wynik
izolacji tego patogenu [
50]. Zespół Gieffersa [
13] wykazał,
że występowanie
Chl. pneumoniae w płynie mózgowordzeniowym
nie ogranicza się tylko do osób cierpiących
na SM, ale także stwierdza się tę bakterię u osób z innymi
schorzeniami układu nerwowego. Schorzeniem neurologicznym
wiązanym z zakażeniem
Chl. pneumoniae jest
choroba Alzheimera [
33], która dotyczy osób po 60 roku
życia i polega na zwyrodnieniu tkanki mózgowej i zaniku
komórek nerwowych, co w konsekwencji prowadzi do
zaburzeń emocjonalnych i behawioralnych oraz ogólnego
otępienia, zaniku pamięci i spadku funkcji poznawczych.
Badając wycinki mózgu metodą PCR, pobrane pośmiertnie
od osób z chorobą Alzheimera, m.in. z hipokampu i płatu
ciemieniowego mózgu, wykazano obecność chromosomalnego
DNA
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, przy
jednoczesnym jego braku w tych samych rejonach mózgu
osób zdrowych [
33]. W badaniach zależności między Chl.
pneumoniae, a chorobą Alzheimera wykorzystując immunohistochemię
i mikroskopię elektronową [
33], stwierdzono,
że
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR, była obecna w makrofagach,
komórkach mikrogleju i astrogleju w różnych
obszarach mózgu, przy jednoczesnym ich braku w tych komórkach
w przypadku osób zdrowych. Ponadto, korzystając
z mikroskopii elektronowej dowiedziono, że w różnych
obszarach mózgu u ludzi z chorobą Alzheimera, występują
inkluzje chlamydialne zawierające ciałka elementarne
EB i siateczkowate RB [
33]. Wykonane na obecność chlamydialnego
RNA badania na tym materiale, metodą RT-PCR,
potwierdziły jego obecność [
33].
Schorzeniem, z którym kojarzone jest zakażenie
Chl.
pneumoniae – biotyp TWAR jest również odczynowe zapalenie
stawów. U tych chorych stwierdzono genomowe
DNA tej bakterii w płynie maziówkowym oraz wysokie
miano swoistych przeciwciał w surowicy [
12]. Opisano także
związek zakażenia
Chl. pneumoniae – biotyp TWAR,
z chłoniakiem skóry typu T-komórkowego, a mianowicie
ziarniniakiem grzybiastym i syndromem Sezary’ego
[
1,
17]. Prawdopodobnie choroby te powstają na skutek
oddziaływania mediatorów zapalenia, m.in. IFN-
g i IP10
(białko indukowane przez interferon), które oddziaływają
na limfocyty T znajdujące się w skórze [
1]. Wykazano
także, że czynnik pobudzający anormalny wzrost limfocytów
T w syndromie Sezary’ego, nazwany SAF (Sezary
cell activation factor) jest chlamydialnym białkiem o masie
30 kDa [
17].
Znane są także doniesienia o udziale
Chl. pneumoniae –
biotyp TWAR w stanie przedrzucawkowym u kobiet. Zespół
von Dadelszena [
53] porównując poziom przeciwciał IgG
anty-
Chl. pneumoniae we wczesnym i późnym stanie przedrzucawkowym
wykazał, że jest on podwyższony we wczesnym
jego stadium. Przypuszcza się, że istnieje pewne
fizjopatologiczne powiązanie pomiędzy stanem przedrzucawkowym,
a wzrostem ryzyka miażdżycy [
53].
Groźnym gatunkiem dla człowieka jest
Chl. psittaci – serotypy
A, C, D i E, które wywołują papuzicę – chorobę
ptasią. Zarażenie następuje od ptaków najczęściej drogą
oddechową lub przez kontakt bezpośredni, skaleczoną
błonę śluzową lub naskórek. Papuzica najczęściej przebiega
bezobjawowo albo jako atypowe zapalenie płuc lub
gorączka bez znanego źródła [
30]. Jednakże zdarzają się
przypadki papuzicy, które mogą przebiegać w postaci atypowego
zapalania płuc lub nawet w postaci sepsy. W obu
przypadkach obserwuje się objawy grypopodobne (gorączka,
dreszcze, bóle mięśni, ból głowy) [
7]. W rzadkich
przypadkach papuzica objawia się zapaleniem wsierdzia,
zapaleniem mięśnia sercowego czy uszkodzeniem nerek
[
52]. Zdarzają się także komplikacje w postaci zapalenia
mózgu, zapalenia opon mózgowych czy zapalenia rdzenia
nerwowego [
7].
Chl. abortus jest szczególnie niebezpieczna dla kobiet,
u których powoduje przede wszystkim poronienia, przedwczesne
porody, śmierć płodów, słabość noworodków.
Zakażenie tą bakterią może też się objawiać gorączką
i wymiotami. Najczęściej do zakażenia kobiet dochodzi
w owczarniach w czasie kocenia się owiec [
22,
39] lub kóz
[
39], jeśli stado jest zarażone
Chl. abortus. Do zakażenia
ludzi może dojść także od bydła i wtedy choroba przebiega
w postaci zapalenia płuc z suchym kaszlem, dusznością
i złym samopoczuciem, kończącym się sinicą [
7,
39]. Także
odbydlęca
Chl. abortus może powodować u kobiet ronienia
[
7]. Zanotowano także udział tej bakterii, potwierdzony
metodą PCR, w zapaleniu narządów miednicy mniejszej
(PID) u kobiety [
54].
Chl. felis bardzo rzadko powoduje chlamydofilozę u ludzi,
jeżeli już dojdzie do zakażenia najczęściej przebiega ono
w postaci atypowego zapalenia płuc, ostrego pęcherzykowatego
zapalenia spojówek, nieżytu nosa, a także może
występować jako zapalenia mięśnia sercowego czy zapalenia
kłębuszków nerkowych [
41,
46].
5. CHLAMYDIE ŚRODOWISKOWE – POTENCJALNE PATOGENY
CZŁOWIEKA [
36]
Pierwszą chlamydią środowiskową patogenną dla ludzi
jest gatunek
Simkania negevensis z rodziny
Simkaniaceae
(
tab. 1), opisany w 1993 r. po raz pierwszy jako mikroorganizm
‘Z’, który izolowano jako wtręt z hodowli komórkowych
HeLa. Zarazek ten izolowano także z zapalenia
oskrzelików od dzieci oraz z zapelnia płuc od osób dorosłych
w Izraelu (Negev). Wykazano także wysoki poziom
przeciwciał anty-
Simkania negevensis u dorosłych ludzi
w Kanadzie w populacji Innuitów oraz u Japończyków.
Oprócz tego zanotowano przypadki izolowania tej bakterii
w Izraelu z wody do picia pobieranej z głębokich studni
lub ze zbiorników podziemnych oraz ze ścieków. Wykazano
także, że
S. negevensis zakaża ameby
Acanthoamoeba
polyphaga, przez co może zagrażać człowiekowi, gdyż
ameby te mogą stanowić element biofilmu np. na soczewkach
kontaktowych.
Drugim potencjalnym patogenem dla ludzi wśród chlamydii
środowiskowych jest przedstawiciel rodziny
Parachlamydiaceae (
tab. 1).
Parachlamydia acanthoamoebae
(
tab. 1), którego szczepy Bn
9, Berg
17 i kilka izolatów bez
nazwy (szczepy UWE1, UWC22, TUME1) stwierdzono
w trofozoitach ameb
Acanthamoeba, które izolowano od ludzi
z epidemii wilgotnej gorączki w Vermont USA (Hall’s
coccus), a także od zdrowej kobiety w Niemczech. Także
Neochlamydia hartmannellae (szczep typowy A1Hsp oraz
inne) z tej rodziny, bytujący wewnątrz ameb
Hartmanella
vermiformis i mogący namnażać się u ameb
Dictyostelium
discoideum, po raz pierwszy wyizolowano z ameb
H.
vermiformis odfiltrowanych z systemu wodnego jednostki
dentystycznej w Niemczech, jest groźnym potencjalnym zarazkiem
dla człowieka. Wynika to z powszechnego występowania
Parachlamydiaceae jako endosymbiontów ameb
w środowisku wodnym, co może stanowić zagrożenie dla
człowieka i co wiąże się z rejestrowaniem
Neochlamydia
hartmanella z gorączką wilgotną (Hall’s coccus) oraz z syndromem
Kawasakiego. Sugeruje się także związek tych bakterii
z zapaleniem rogówki u osób noszących szkła kontaktowe,
jako że ameby znajdują się w biofilmie tworzonym
często na soczewkach. Wykazano, że u osób z obniżoną odpornością,
parachlamydie mogą być przyczyną zmian skórnych.
Przyjmuje się, że zdolność tych mikroorganizmów
do życia wewnątrz ameb, może się przyczyniać do utajonych
infekcji dróg oddechowych u ludzi, gdyż ameby ulegając
lizie w błonie śluzowej nosa, uwalniają parachlamydie
i w ten sposób może dochodzić do zakażania komórek
układu oddechowego człowieka. Wykazano, że należąca do
rodziny
Parachlamydiaceae – Parachlamydia sp. – szczep
UV7, izolowana z mułu pochodzącego z systemu nawadniania
roślin w Niemczech, powoduje zmiany cytopatyczne na
ssaczych liniach komórkowych (Vero, Hela 229, NCI-H292)
w postaci małych inkluzji wewnątrz komórek.
PODSUMOWANIE
Z przeglądu piśmiennictwa o chlamydiach i chlamydofilach wynika, że zarazki te, a także choroby wywoływane
przez nie u ludzi, są znane od tysięcy lat i mimo postępu
metod badawczych, wiedza o nich jako czynnikach chorobotwórczych,
jest nadal niepełna. Bakterie te powodują
wiele różnych schorzeń typowych (
tab. 2), takich jak
np. trachoma (jaglica), choroby dróg oddechowych oraz
rozrodczych, w tym ronienia. Obecnie łączy się je także
z chorobami układu krążenia (np. z chorobą wieńcową
serca, miażdżycą, zawałem mięśnia sercowego), z chorobami
układu nerwowego (choroba Alzheimera, stwardnienie
rozsiane), z chłoniakami T-komórkowymi skóry
czy sarkoidozą. Ostatnie lata badań dowiodły występowanie
chlamydii środowiskowych, jako endosymbiontów
ameb występujących powszechnie w środowisku wodnym
i mających łatwy dostęp do organizmu człowieka (drogi
oddechowe, biofilm soczewek kontaktowych). Takie powszechne
i szerokie występowanie chlamydii oraz chorób
przez nie wywoływanych, w połączeniu z ich kłopotliwą
diagnostyką wynikającą z ich biologii, wymaga,
jak się wydaje, dalszego i swoistego prezentowania informacji
o nich.
PIŚMIENNICTWO
[1] Abrams J.T., Balin B.J., Vonderheid E.C.: Association between Sézary T cell-activating factor,
Chlamydia pneumoniae, and cutaneous T cell lymphoma. Ann. NY Acad. Sci., 2001; 941: 69-85
[
PubMed]
[2] Berger L., Volp K., Mathews S., Speare R., Timms P.:
Chlamydia pneumoniae in a free-ranging giant barred frog (Mixophyes iteratus) from Australia. J. Clin. Microbiol., 1999; 37: 2378-2380
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[3] Bowden F.J.: Reappraising the value of urine leukocyte esterase testing in the age of nucleic acid amplification. Sex. Transm. Dis., 1998; 25: 322-326
[
PubMed]
[4] Cox H.U., Hoyt P.G., Poston R.P., Snider T.G.3rd, Lemarchand T.X., O'Reilly K.L.: Isolation of an avian serovar of
Chlamydia psittaci from a case of bovine abortion. J. Vet. Diagn. Invest., 1998; 10: 280-282
[
PubMed] [
Full Text PDF]
[5] Cram L.F., Zapata M.I., Toy E.C., Baker B.3rd: Genitourinary infections and their association with preterm labor. Am. Fam. Physician, 2002; 65: 241-248
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[6] Dean D., Suchland R.J., Stamm W.E.: Evidence for long-term cervical persistence of
Chlamydia trachomatis by omp1 genotyping. J. Infect. Dis., 2000; 182: 909-916
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[7] Deptuła W., Pawlikowska M., Travniček M.: Chlamydofilozy u zwierząt i ludzi. Medycyna Wet., 2002; 58: 337-340
[
Abstract]
[8] Deptuła W., Pawlikowska M., Travniček M.: Nowe dane na temat systematyki chlamydii. Post. Mikrobiol., 2002; 41: 71-83
[
Abstract]
[9] Deptuła W., Ruczkowska J., Szenfeld J., Choroszy-Król I., Travniček M.: Immunologicky status u hovadzieho dobytka prirodzene infikovaneho mikroorganizmami
Chlamydia trachomatis a
Chlamydia psittaci. Vet. Med. (Praha), 1990; 35: 73-80
[10] Everett K.D., Bush R.M., Andersen A.A.: Emended description of the order Chlamydiales, proposal of Parachlamydiaceae fam. nov. and Simkaniaceae fam. nov., each containing one monotypic genus, revised taxonomy of the family Chlamydiaceae, including a new genus and five new species, and standards for the identification of organisms. Int. J. Syst. Bacteriol., 1999; 49: 415-440
[
PubMed] [
Full Text PDF]
[11] Garity G.M.: Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. Second Edition. Vol. 1. Ed.: Boone D.R., Castenholz R.W., Springer-Verlag, New York 2001
[12] Gérard H.C., Schumacher H.R., El-Gabalawy H., Goldbach-Mansky R., Hudson A.P.:
Chlamydia pneumoniae present in the human synovium are viable and metabolically active. Microb. Pathog., 2000; 29: 17-24
[
PubMed]
[13] Gieffers J., Pohl D., Treib J., Dittmann R., Stephan C., Klotz K., Hanefeld F., Solbach W., Haass A., Maass M.: Presence of
Chlamydia pneumoniae DNA in the cerebral spinal fluid is a common phenomenon in a variety of neurological diseases and not restricted to multiple sclerosis. Ann. Neurol., 2001; 49: 585-589
[
PubMed]
[14] Grayston J.T.: Infections caused by
Chlamydia pneumoniae strain TWAR. Clin. Infect. Dis., 1992; 15: 757-761
[
PubMed]
[15] Grayston J.T., Kuo C.C., Campbell L.A., Wang S.P.:
Chlamydia pneumoniae sp. nov. for Chlamydia sp. strain TWAR. Int. J. Syst. Bacteriol., 1989; 39: 88-90
[16] Gupta S., Leatham E.W., Carrington D., Mendall M.A., Kaski J.C., Camm A.J.: Elevated
Chlamydia pneumoniae antibodies, cardiovascular events, and azithromycin in male survivors of myocardial infarction. Circulation, 1997; 96: 404-407
[
PubMed] [
Full Text HTML]
[17] Halme S., Saikku P., Surcel H.M.: Characterization of
Chlamydia pneumoniae antigens using human T cell clones. Scand. J. Immunol., 1997; 45: 378-384
[
PubMed]
[18] Hoelzle K., Wittenbrink M.M., Corboz L., Hoelzle L.E.:
Chlamydophila abortus-induced keratoconjunctivitis in a dog. Vet. Rec., 2005; 157: 632-633
[
PubMed]
[19] Holt J.G., Krieg N.R., Sneath P.H.A., Staley J.T., Williams S.T.: Bergeys's Manual of Systematic Bacteriology. Ninth edition, Ed. Hensyl W.R., Williams& Wilkins, Baltimore 1994
[20] Jackson L.A., Campbell L.A., Schmidt R.A., Kuo C.C., Cappuccio A.L., Lee M.J., Grayston J.T.: Specificity of detection of
Chlamydia pneumoniae in cardiovascular atheroma: evaluation of the innocent bystander hypothesis. Am. J. Pathol., 1997; 150: 1785-1790
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[21] Jauhiainen T., Tuomi T., Leinonen M., Kark J.D., Saikku P.: Interference of immunoglobulin G (IgG) antibodies in IgA antibody determinations of
Chlamydia pneumoniae by microimmunofluorescence test. J. Clin. Microb., 1994; 32: 839-840
[
PubMed] [
Full Text PDF]
[22] Jorgensen D.M.: Gestational psittacosis in a Montana sheep rancher. Emerg. Infect. Dis., 1997; 3: 191-194
[
PubMed]
[23] Juvonen J., Laurila A., Juvonen T., Aläkarppä H., Surcel H.M., Lounatmaa K., Kuusisto J., Saikku P.: Detection of
Chlamydia pneumoniae in human nonrheumatic stenotic aortic valves. J. Am. Coll. Cardiol., 1997; 29: 1054-1059
[
PubMed]
[24] Koyi H., Brandén E., Gnarpe J., Gnarpe H., Steen B.: An association between chronic infection with
Chlamydia pneumoniae and lung cancer. A prospective 2-year study. APMIS, 2001; 109: 572-580
[
PubMed]
[25] Kuo C.C., Jackson L.A., Campbell L.A., Grayston J.T.:
Chlamydia pneumoniae (TWAR). Clin. Microbiol. Rev., 1995; 8: 451-461
[
PubMed] [
Full Text PDF]
[26] Lipman N.S., Yan L.L., Murphy J.C.: Probable transmission of
Chlamydia psittaci from a macaw to a cat. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1994; 204: 1479-1480
[
PubMed]
[27] Lynch C.M., Felder T.L., Schwandt R.A., Shashy R.G.: Lymphogranuloma venereum presenting as a rectovaginal fistula. Infect. Dis. Obstet. Gynecol., 1999; 7: 199-201
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[28] Magro C.M., Crowson A.N., Peeling R.: Vasculitis as the basis of cutaneous lesions in Reiter's disease. Hum. Pathol., 1995; 26: 633-638
[
PubMed]
[29] Mardh P.A., Paavonen J., Parlakkainen M.: Chlamydia. Plenum Med. Book Comp., New York 1989
[30] Moroney J.F., Guevara R., Iverson C., Chen F.M., Skelton S.K., Messmer T.O., Plikaytis B., Williams P.O., Blake P., Butler J.C.: Detection of chlamydiosis in a shipment of pet birds, leading to recognition of an outbreak of clinically mild psittacosis in humans. Clin. Infect. Dis., 1998; 26: 1425-1429
[
PubMed]
[31] Mutlu B., Mutlu N., Yücesoy G.: The incidence of
Chlamydia trachomatis in women with urethral syndrome. Int. J. Clin. Pract., 2001; 55: 525-526
[
PubMed]
[32] Nitsch-Osuch A., Choroszy-Król I., Wardyn A.K.: Zakażenia wywołane przez Chlamydia pneumoniae. Górnicki Wydawnictwo Medyczne, Wrocław 2001, s. 1-79
[33] Nowaczyk P., Deptuła W.:
Chlamydophila pneumoniae - biotyp TWAR - wybrane dane. Post. Hig. Med. Dośw., 2006; 60: 609-616
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[34] Nyári T., Woodward M., Mészáros G., Karsai J., Kovács L.:
Chlamydia trachomatis infection and the risk of perinatal mortality in Hungary. J. Perinat. Med., 2001; 29: 55-59
[
PubMed]
[35] Pawlikowska M.: Kształtowanie się wybranych parametrów odporności u królików immunizowanych różnymi szczepami
Chlamydia sp. Praca doktorska, Wydział Nauk Przyrodniczych, Uniwersytet Szczeciński 2003
[36] Pawlikowska M., Deptuła W.: Chlamydie środowiskowe potencjalne patogeny człowieka i zwierząt. Medycyna Wet., 2007; 63: 131-135
[37] Podsiadły E., Frącka B., Szmigielska A., Tylewska-Wierzbanowska S.: Seroepidemiological studies of
Chlamydia pneumoniae infections in 1-36 months old children with respiratory tract infections and other diseases in Poland. Pol. J. Microbiol., 2005; 54: 215-219
[
PubMed]
[38] Podsiadły E., Tylewska-Wierzbanowska S.:
Chlamydia pneumoniae - biologia i chorobotwórczość. Post. Mikrobiol., 1998; 2: 145-166
[39] Pospischil A., Thoma R., Hilbe M., Grest P., Gebbers J.O.: Abortion in woman caused by caprine
Chlamydophila abortus (
Chlamydia psittaci serovar 1). Swiss Med. Wkly., 2002; 132: 64-66
[
PubMed] [
Full Text PDF]
[40] Reed K.D., Ruth G.R., Meyer J.A., Shukla S.K.:
Chlamydia pneumoniae infection in a breeding colony of African clawed frogs (
Xenopus tropicalis). Emerg. Infect. Dis., 2000; 6: 196-199
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[41] Regan R.J., Dathan J.R., Treharne J.D.: Infective endocarditis with glomerulonephritis associated with cat chlamydia (C. psittaci) infection. Br. Heart J., 1979; 42: 349-352
[
PubMed]
[42] Rogers D.G., Andersen A.A., Hogg A., Nielsen D.L., Huebert M.A.: Conjunctivitis and keratoconjuctivitis associated with chlamydiae in swine. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1993; 203: 1321-1323
[
PubMed]
[43] Ruczkowska J., Choroszy-Król I., Deptuła W.: Detection of Ch. trachomatis in the bulls ejaculates by immunoenzymatic/Chlamydiazyme Abbott/immunofluorescent/Chlamyset Orion/and cell culture/McCoy/methods. Zoonoses Cong. Int. Participation VI
th Joint Meeting of European Leptospira Workers, Brno 1988, p.40
[44] Saikku P., Leinonen M., Tenkanen L., Linnanmäki E., Ekman M.R., Manninen V., Mänttäri M., Frick M.H., Huttunen J.K.: Chronic
Chlamydia pneumoniae infection as a risk factor for coronary disease in the Helsinki Heart Study. Ann. Intern. Med., 1992; 116: 273-278
[
PubMed]
[45] Schachter J., Osoba A.O.: Lymphogranuloma venereum. Br. Med. Bull., 1983; 39: 151-154
[
PubMed]
[46] Schachter J., Ostler H.B., Meyer K.F.: Human infection with the agent of feline pneumonitis. Lancet, 1969; 1: 1063-1065
[
PubMed]
[47] Smith J.S., Munoz N., Herrero R., Eluf-Neto J., Ngelangel C., Franceschi S., Bosch F.X., Walboomers J.M., Peeling R.W.: Evidence for
Chlamydia trachomatis as a human papillomavirus cofactor in the etiology of invasive cervical cancer in Brazil and the Philippines. J. Infect. Dis., 2002; 185: 324-331
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[48] Sobański P., Sinkiewicz W.:
Chlamydia pneumoniae- następny czynnik ryzyka choroby niedokrwiennej serca? Czynniki Ryzyka, 1997; 28: 3-4
[49] Soldati G., Lu Z.H., Vaughan L., Polkinghorne A., Zimmermann D.R., Huder J.B., Pospischil A.: Detection of Mycobacteria and Chlamydiae in granulomatous inflammation of reptiles: a retrospective study. Vet. Pathol., 2004; 41: 388-397
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[50] Sriram S., Mitchell W., Stratton S.: Multiple sclerosis associated with
Chlamydia pneumoniae infection of the CNS. Neurology, 1998; 50: 571-572
[
PubMed]
[51] Vanrompay D., De Meurichy W., Ducatelle R., Haesebrouck F.: Pneumonia in Moorish tortoises (
Testudo graeca) associated with avian serovar A
Chlamydia psittaci. Vet. Rec., 1994; 135: 284-285
[
PubMed]
[52] Vanrompay D., Ducatelle R., Haesebrouck F.:
Chlamydia psittaci infections: a review with emphasis on avian chlamydiosis. Vet. Microbiol., 1995; 45: 93-119
[
PubMed]
[53] von Dadelszen P., Magee L.A., Krajden M., Alasaly K., Popovska V., Devarakonda R.M., Money D.M., Patrick D.M., Brunham R.C.: Levels of antibodies against cytomegalovirus and
Chlamydophila pneumoniae are increased in early onset pre-eclampsia. Br. J. Obst. Gynaecol., 2003; 110: 725-730
[
PubMed]
[54] Walder G., Meusburger H., Hotzel H., Oehme A., Neunteufel W., Dierich M.P., Würzner R.:
Chlamydophila abortus pelvic inflammatory disease. Emerg. Infect. Dis., 2003; 9: 1642-1644
[
PubMed] [
Full Text HTML] [
Full Text PDF]
[55] Zdrodowska-Stefanow B., Ostaszewska I.: Chlamydia trachomatis - zakażenia u ludzi. Wyd. Volumed, Wrocław 2000, str. 1-114